TINCIÓN DE WRIGHT 13/11/2014

Material necesario

• Microscopio óptico.
• Cristalizador.
• Puentes de tinción.
• Pipetas Pasteur con chupete.
• Frasco lavador.
• Guantes.
• Tubos de ensayo.

Reactivos

• Solución de eosina-azul de metileno según Wright.
• Solución tampón pH 72,
• Aceite de inmersión.

Muestra

Sangre capilar fresca o venosa anticoagulada. Los anticoagulantes más adecuados son la heparina y el EDTA.

Técnica

1. Realizar un frotis sanguíneo muy fino. Dejar secar al aire.
2. Sobre la extensión colocada horizontalmente en el puente de tinción verter 1ml de eosina-azul de metileno. Dejamos actuar un minuto y lavamos con solución tampón pH 7,2. Dejamos escurrir y secar en posición vertical.
3. Inmediatamente antes de su empleo y en un tubo de ensayo, diluimos 0,5 ml. de eosina-azul de metileno con  0,5 ml de solución tampón pH 7,2. Mezclamos bien y cubrimos con esta dilución la extensión. Teñimos durante 3-5 minutos y lavamos con agua del grifo. Volvemos a lavar con solución tampón pH 7,2. Dejamos escurrir y secar en posición vertical

Imágen byhttp://www.word.photos/index.php?keyword=tecnica%20de%20tincion%20del

Lectura de resultados

Depositamos una gota de aceite de inmersión y observamos con el objetivo de 100x.

Las células se observan coloradas de la misma manera que con la tinción de Giemsa.

Imágen by: http://conocetumascota1.blogspot.com/2014/07/colorantes-utilizados-en-histologia-tejidos.html